Сибирский федеральный университет

Тип публикации: статья из журнала

Год издания: 2022

Идентификатор DOI: 10.17650/1818-8346-2022-17-4-118-125

Ключевые слова: fragment analysis, pCR electrophoresis, acute myeloid leukemia, sanger sequencing, фрагментный анализ, ПЦР-электрофорез, <i>FLT3-ITD</i>, острый миелоидный лейкоз, секвенирование по Сэнгеру

Аннотация: Введение. Наличие мутаций <i>FLT3-ITD</i> у пациентов с острым миелоидным лейкозом служит маркером плохого прогноза, который включен в перечень для стратификации риска ELN 2017 г. Основным критерием для разделения пациентов на группы по прогнозируемым исходам стало аллельное соотношение (allelic ratio, AR) с границей 0,5: показатель AR <0,5 считается низким, ≥0,5 - высоким. при этом если важность определения AR не вызывает сомнения, то значение информации о длине повтора и локализации все еще остается спорным. Распространены 2 подхода к скринингу <i>FLT3-ITD</i>. первый - более доступный и дешевый метод полимеразной цепной реакции (пЦР) с электрофоретической детекцией, второй - более дорогостоящий и требующий наличия специального оборудования метод фрагментного анализа, позволяющий не только обнаружить мутацию и определить длину повтора, но и провести количественную оценку, т. е. рассчитать AR.Цель исследования - сравнить методы фрагментного анализа и пЦР-электрофореза при поиске мутаций <i>FLT3-ITD</i> в образцах ДНК от пациентов с диагнозом острого миелоидного лейкоза.Материалы и методы. За период 2020-2022 гг. методами фрагментного анализа и пЦР-электрофореза были проанализированы образцы крови и/или костного мозга от 45 пациентов с подтвержденным диагнозом острого миелоидного лейкоза, получавших лечение в Краевой клинической больнице г. Красноярска. подтверждение и идентификацию мутаций <i>FLT3-ITD</i> проводили секвенированием по Сэнгеру.Результаты. Среди 45 пациентов оба метода позволили выявить мутации <i>FLT3-ITD</i> у 11 (24,45 %) пациентов. по результатам фрагментного анализа медиана длины повтора составила 42,70 (26,01-99,84) пары оснований, AR - 0,532 (0,027- 3,328), уровень аллельной нагрузки (allelic frequency, Af) - 34,71 (2,67-76,90) %. В 1 образце выявлено 3 разных ITd. Секвенирование по Сэнгеру позволило идентифицировать мутации у 9 из 11 пациентов. Заключение. фрагментный анализ и пЦР-электрофорез показали сходные результаты при оценке образцов с разной длиной ITd и разным AR. Можно предполагать, что в случае небольшого размера ITd и низких значений AR и Af при использовании пЦР-электрофореза мутантный аллель не будет визуализироваться, что может привести к получению ложноотрицательного результата. Недостатком использования метода пЦР-электрофореза является также то, что без применения специальных программ, позволяющих определить размер и интенсивность свечения полосы, соответствующей мутантному аллелю, нельзя определить значение AR, что важно для стратификации риска острого миелоидного лейкоза. Таким образом, для обнаружения <i>FLT3-ITD</i> мы рекомендуем использовать метод фрагментного анализа. Background. The presence of the <i>FLT3-ITD</i> mutations in patients with AML serves as a marker of poor prognosis, which is included in the ELN 2017 risk stratification guideline. The main criterion for dividing patients into groups according to the predicted outcomes was the allelic ratio (AR) with a cutoff of 0.5: an AR value <0.5 is considered low, and ≥0.5 is considered high. At the same time, if the importance of AR determination is beyond doubt, the value of information about the length of the repeat and localization is still controversial. There are two common approaches for <i>FLT3-ITD</i> screening. The first, more accessible and cheaper method is the method of pCR electrophoresis and the second, more expensive and requiring special equipment, is the fragment analysis method, which allows not only to detect a mutation and determine the repeat length, but also to quantify or calculate AR.Aim. To compare fragment analysis and pCR electrophoresis in the search for the <i>FLT3-ITD</i> mutations in dNA samples from AML patients.Materials and methods. for the period of 2020-2022 fragment analysis and pCR electrophoresis were used to analyze blood and/or bone marrow samples taken from 45 patients with a confirmed diagnosis of AML who were treated at the Regional Clinical Hospital (Krasnoyarsk). Confirmation and identification of the <i>FLT3-ITD</i> mutations was performed by means of Sanger sequencing.Results. both methods revealed the <i>FLT3-ITD</i> mutations in 11 (24.45 %) patients among the 45 patients studied. According to the results of fragment analysis, the median repeat length was 42.70 base pairs (range 26.01-99.84 base pairs), AR was 0.532 (0.027-3.328), and the allelic frequency (Af) was 34.71 (2.67-76.90) %. Three different ITds were identified in one sample. Sanger sequencing identified mutations in 9 of 11 patients.Conclusion. fragment analysis and pCR electrophoresis showed similar results when analyzing samples with different ITd lengths and with different allelic ratios. but it can be assumed that in the case of a small ITd and low AR and Af values, when using pCR electrophoresis, the mutant allele will not be visualized, which can lead to a false negative result. The disadvantage of using the pCR electrophoresis method is also that without the use of special programs that allow determining the size and intensity of the band corresponding to the mutant allele, it is impossible to determine the AR value, which is important for AML risk stratification. Thus, for detection of the <i>FLT3-ITD</i> we recommend using the fragment analysis method.

Журнал: Онкогематология

Выпуск журнала: Т. 17, № 4

Номера страниц: 118-125

ISSN журнала: 18188346

Место издания: Москва

Издатель: ООО "Издательский дом "АБВ-пресс"

• Маслюкова И. Е. (ФГБУ «Федеральный Сибирский научно-клинический центр Федерального медико-биологического агентства»)
• Курочкин Д. В. (ФГБУ «Федеральный Сибирский научно-клинический центр Федерального медико-биологического агентства»)
• Мартынова Е. В. (КГБУЗ «Краевая клиническая больница»)
• Бахтина В. И. (ФГБОУ ВО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России)
• Субботина Т. Н. (ФГБУ «Федеральный Сибирский научно-клинический центр Федерального медико-биологического агентства»)

• Ядро РИНЦ (eLIBRARY.RU)
• Список ВАК